原代細(xì)胞培養(yǎng)的注意事項(xiàng)主要包括以下幾個(gè)方面：

　　

　　1、取材與處理：

　　

　　選擇健康、無感染的組織或器官作為細(xì)胞來源，以確保獲得高質(zhì)量的原代細(xì)胞。取材操作要迅速，盡量減少組織在空氣中暴露的時(shí)間，避免污染和細(xì)胞損傷。例如，對于孕鼠取材，浸泡乙醇時(shí)間應(yīng)控制在1分鐘左右，不能過長，以確保胚胎細(xì)胞活性。

　　

　　2、無菌操作：

　　

　　整個(gè)取材和培養(yǎng)過程都要嚴(yán)格進(jìn)行無菌操作，操作要求應(yīng)高于外科手術(shù)標(biāo)準(zhǔn)。使用經(jīng)過滅菌的工具和試劑，實(shí)驗(yàn)者離開超凈臺時(shí)，要隨時(shí)用肘部關(guān)閉工作窗。

　　

　　3、消化與分離：

　　

　　如果采用酶消化法，要根據(jù)組織特性選擇合適的消化酶（如膠原酶、胰酶等），并控制好消化時(shí)間和溫度。例如，胰酶的溫度應(yīng)低于37℃，濃度只需平時(shí)消化細(xì)胞濃度的一半，以避免細(xì)胞被過度消化而受損。組織塊法中，組織塊剪碎后接種到培養(yǎng)瓶壁上，要注意組織塊的粘附情況，避免組織塊漂浮起來影響細(xì)胞生長。

　　

　　4、培養(yǎng)條件：

　　

　　提供適宜的培養(yǎng)條件，包括溫度、濕度、氧氣濃度、營養(yǎng)物質(zhì)等。一般來說，動物細(xì)胞培養(yǎng)的適宜溫度為36.5℃±0.2℃，二氧化碳濃度為5%，相對飽和濕度為95%。培養(yǎng)液的選擇要根據(jù)不同的細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)要求進(jìn)行。常用的有L/HDMEM、F12DMEM、RPMI1640等。

　　

　　5、觀察與換液：

　　

　　定期觀察細(xì)胞的生長狀況，包括細(xì)胞形態(tài)、貼壁情況、是否有污染等。原代細(xì)胞在培養(yǎng)2天后可能會出現(xiàn)細(xì)胞液變黃的現(xiàn)象，這是正?，F(xiàn)象，是由于細(xì)胞在貼壁生長過程中釋放CO2和其他物質(zhì)導(dǎo)致培養(yǎng)液PH發(fā)生改變。根據(jù)細(xì)胞的生長情況及時(shí)換液，一般48~72小時(shí)可換液一次。換液時(shí)要注意去除漂浮的組織塊和殘留的血細(xì)胞。

　　

　　6、傳代與凍存：

　　

　　原代細(xì)胞的傳代次數(shù)不宜過多，一般不超過3-5次，否則會導(dǎo)致細(xì)胞老化和突變。當(dāng)細(xì)胞生長至80%~90%融合時(shí)，可以進(jìn)行傳代或凍存。凍存液的配制要根據(jù)具體的細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)室的經(jīng)驗(yàn)來確定，常見的配方有10%DMSO+90%胎牛血清等。

　　

　　7、細(xì)胞鑒定：

　　

　　有時(shí)候獲取的原代細(xì)胞可能不是期望的細(xì)胞類型，需要進(jìn)行細(xì)胞鑒定。可以通過購買特定的細(xì)胞表面標(biāo)志物抗體或染色試劑來進(jìn)行鑒定。

　　

　　原代細(xì)胞培養(yǎng)需要注意細(xì)胞的來源、處理、無菌操作、消化與分離、培養(yǎng)條件、觀察與換液、傳代與凍存以及細(xì)胞鑒定等方面。只有嚴(yán)格遵守這些注意事項(xiàng)，才能保證原代細(xì)胞培養(yǎng)的成功和細(xì)胞的質(zhì)量。